貝賽爾特公司概況

Nature重磅 | 基因編輯裏程碑成果,David Liu開(kāi)發新系統,無需供體(tǐ)DNA模闆,有(yǒu)望治療大(dà)部分遺傳病

大(dà)多(duō)數(shù)導緻疾病的遺傳變異很(hěn)難有(yǒu)效糾正,且沒有(yǒu)過多(duō)的副産物。近期,博德研究所David Liu團隊在Nature 在線發表題為(wèi)”Search-and-replace genome editing without double-strand breaks or donor DNA“的研究論文,該研究描述了Prime編輯,這是一種通(tōng)用且精确的基因組編輯方法,它使用融合了工程逆轉錄酶的催化受損的Cas9,将新的遺傳信息直接寫入指定的DNA位點,并使用Prime編輯向導RNA(pegRNA)進行(xíng)編輯。

研究人(rén)員在人(rén)細胞中進行(xíng)了175次以上(shàng)的編輯,包括靶向插入,缺失和(hé)所有(yǒu)12種類型的點突變,而無需雙鏈斷裂或供體(tǐ)DNA模闆。研究人(rén)員在人(rén)類細胞中應用了Prime編輯功能,以有(yǒu)效地糾正鐮狀細胞疾病(要求HBB發生(shēng)轉化)和(hé)Tay-Sachs病(要求HEXA發生(shēng)缺失)的主要遺傳原因。四個(gè)人(rén)類細胞系和(hé)有(yǒu)絲分裂後的小(xiǎo)鼠皮層神經元原代以不同的效率支持Prime編輯。與堿基編輯相比,Prime編輯提供了效率和(hé)産品純度方面的優勢;與堿基編輯相比,具有(yǒu)互補的優勢和(hé)劣勢,并且在已知Cas9脫靶位點處的脫靶編輯比Cas9核酸酶低(dī)得(de)多(duō)。Prime編輯大(dà)大(dà)擴展了基因組編輯的範圍和(hé)能力,并且原則上(shàng)可(kě)以糾正約89%的已知緻病性人(rén)類遺傳變異。截止文章發表,Editas Medicine股票(piào)大(dà)漲。 2019年12月12日,上(shàng)海科技(jì)大(dà)學陳佳,楊貝及中國科學院上(shàng)海營養與健康研究所楊力在Cell 發表題為(wèi)“One Prime for All Editing”的點評文章,指出這種“一勞永逸”的編輯系統将推動生(shēng)物醫(yī)學研究的發展,并具有(yǒu)對人(rén)類健康的臨床潛力。

在任何活細胞或有(yǒu)機體(tǐ)的基因組中進行(xíng)任意改變的能力都是生(shēng)命科學的長期願望。盡管基因組編輯技(jì)術(shù)取得(de)了飛速發展,但(dàn)與疾病相關的已知> 75,000種人(rén)類遺傳變異中的大(dà)多(duō)數(shù)仍然難以糾正。可(kě)編程核酸酶(例如CRISPR-Cas9)産生(shēng)雙鏈DNA斷裂(DSB),可(kě)以通(tōng)過在靶位點誘導插入和(hé)缺失(indels)的混合物來(lái)破壞基因。

然而,DSB與不期望的結果相關,包括易位和(hé)p53激活等。此外,絕大(dà)多(duō)數(shù)病原體(tǐ)等位基因來(lái)自特定的插入,缺失或堿基取代,需要更精确的編輯技(jì)術(shù)來(lái)糾正。

體(tǐ)外和(hé)酵母細胞中Prime編輯和(hé)可(kě)行(xíng)性研究的概述

DSBs刺激的同源性定向修複(HDR)已被廣泛用于精确的DNA編輯。但(dàn)是,HDR依賴于外源供體(tǐ)DNA修複模闆,通(tōng)常會(huì)通(tōng)過DSB的末端修複産生(shēng)過量的indel,并且在大(dà)多(duō)數(shù)治療相關的細胞類型(T細胞和(hé)某些(xiē)幹細胞是重要的例外)中效率低(dī)下。雖然提高(gāo)DSB介導的編輯的效率和(hé)精度仍然是有(yǒu)前途的工作(zuò)的重點,但(dàn)這些(xiē)挑戰促使人(rén)們探索替代的精确基因組編輯策略。

PE1和(hé)PE2對人(rén)類細胞中的基因組DNA進行(xíng)初步編輯

堿基編輯可(kě)以有(yǒu)效地進行(xíng)四個(gè)堿基轉換突變(C→T,G→A,A→G和(hé)T→C),而無需在包括哺乳動物在內(nèi)的許多(duō)細胞類型和(hé)生(shēng)物體(tǐ)中使用DSB,但(dàn)目前無法執行(xíng)八個(gè)轉換突變 (C→A,C→G,G→C,G→T,A→C,A→T,T→A和(hé)T→G),例如需要從T•A到A•T突變直接糾正鐮狀細胞病(HBB E6V)的最常見原因。 此外,尚無報道(dào)采用無DSB的方法進行(xíng)靶向缺失,如去除引起Tay-Sachs病(HEXA 1278 + TATC)的4堿基重複,或靶向插入,如需要直接插入3個(gè)堿基來(lái)糾正最常見的囊性纖維化病因(CFTRΔF508)。因此,即使在大(dà)多(duō)數(shù)細胞類型中,有(yǒu)針對性的轉化,插入和(hé)缺失也很(hěn)難有(yǒu)效校(xiào)正,并且沒有(yǒu)過多(duō)的副産物,即使它們共同構成了大(dà)多(duō)數(shù)已知的緻病等位基因。

PE3和(hé)PE3b系統在非編輯鏈上(shàng)刻痕以提高(gāo)Prime編輯效率

在這裏,研究人(rén)員描述了Prime編輯的發展,一種“搜索并替換”的基因組編輯技(jì)術(shù),可(kě)在人(rén)細胞中介導靶标插入,缺失,所有(yǒu)12種可(kě)能的堿基間(jiān)轉換及其組合,而無需DSB或供體(tǐ)DNA模闆。最初以PE1為(wèi)例的Prime編輯器(qì)(PE)使用與RNA可(kě)編程切口酶融合的逆轉錄酶(RT)和(hé)Prime編輯擴展的指導RNA(pegRNA),将遺傳信息從pegRNA的延伸部分直接複制(zhì)到目标基因組DNA位點中。 PE2使用工程RT來(lái)提高(gāo)編輯效率,而PE3切掉未編輯的鏈以誘導其替換并進一步提高(gāo)編輯效率。

在HEK293T細胞中的七個(gè)內(nèi)源基因組位點,用PE3靶向插入,缺失和(hé)所有(yǒu)12種類型的點突變。

與已知的Cas9脫靶基因座相比,Prime編輯提供的脫靶活性遠低(dī)于Cas9,與Cas9引起的HDR相比,副産物少(shǎo)得(de)多(duō),效率更高(gāo)或相似,并且與堿基編輯器(qì)相比具有(yǒu)互補的優勢和(hé)劣勢。通(tōng)過無需DSB或供體(tǐ)DNA模闆即可(kě)進行(xíng)精确的靶向插入,缺失和(hé)所有(yǒu)12種可(kě)能的點突變類别,Prime編輯具有(yǒu)促進絕大(dà)多(duō)數(shù)緻病等位基因研究和(hé)校(xiào)正的潛力。

Prime編輯緻病性突變,對原代小(xiǎo)鼠皮層神經元進行(xíng)Prime編輯,并比較四